Home Wetenschappelijke Onderzoek Virologie Mond-en klauwzeer (FMD)
Afdrukken E-mail

Mond- en klauwzeer (MKZ)

ALGEMENE INFORMATIE :

  • Family: Picornaviridae, subfamily:, genus: Aphthovirus
  • Aangifteplichtige ziekte: Ja

IN EEN PAAR LIJNEN ;

Mond- en klauwzeer (FMD)Het mond- en klauwzeervirus (MKZ) virus is één van de twee leden van het Aphthovirus genus binnen de familie Picornaviridae. Het MKZ-virus is antigenisch heterogeen en zeven serotypes worden herkend: O, A, C, ASIA1, SAT1, SAT2, SAT3 (SAT = Southern African Territories). Verder is er binnen elk serotype aanzienlijke antigenische verscheidenheid. Dat geldt in het bijzonder voor type A.
MKZ is een uiterst besmettelijke en vernietigende ziekte bij vee. Alle tweehoevigen zijn vatbaar.
Financiële verliezen als een resultaat van MKZ kunnen groot zijn. Er zijn rechtstreekse verliezen wegens de sterfte bij jonge dieren, verlies van melk en vlees en een daling van productiviteit. De kosten gepaard gaande met stamping-out en controle kunnen hoog zijn en, daarenboven, zijn er onrechtstreekse verliezen wegens het opleggen van marktbeperkingen.
MKZ is endemisch met sterke verspreiding in het grootste deel van Afrika en het Midden-Oosten (type O en A). In Zuid-Afrika is de ziekte vooral beperkt tot wilde dieren in nationale parken (SAT types). MKZ is endemisch in Centraal- en Zuid-Oost-Azië, het Indische subcontinent en waarschijnlijk in China (type O, A en Asia). Japan (2000), Korea (2000) en Taiwan (1997-2000) zijn lange tijd vrij geweest tot er type O PanAsia uitbraken kwamen.Mond- en klauwzeer (FMD)

 

De diagnose van de ziekte gebeurt aanvankelijk op klinische gronden en wordt daarna bevestigd in het laboratorium door klassieke virologische, serologische of moleculaire biologische  methodes. De beste monsters voor virusdetectie zijn het epithelium, blaasvocht en serum of EDTA-bloed (virusisolatie, Ag-ELISA, real-time RT-PCR).

Vaccinatie is de meest doeltreffende manier om verliezen van MKZ te beperken maar zal dikwijls moeten gecombineerd worden met Stamping Out.

Het CODA-CERVA verricht met haar partners het Rega Instituut (KUL) en Okapi Sciences wetenschappelijk onderzoek naar de ontwikkelikking van efficiënte en selectieve antivirale moleculen, die een alternatief kunnen bieden voor of complementair kunnen zijn met (nood)vaccinatie en Stamping Out.

 

fivre aphteuse virusROL VAN HET CODA-CERVA :

  • DIAGNOSE

Het CODA-CERVA is het belgisch nationaal referentielaboratorium voor mond-en klauwzeer (MKZ).

- FAO Reference Center

- OIE (World Organisation for Animal Health) Samenwerkend Centrum voor Validatie, Kwaliteitsbepaling en Kwaliteitscontrole van Diagnostische testen en Vaccintesten voor Vesiculaire Ziekten in Europa

- Specifieke informatie voor diagnoses (matrix, testen)
- Virusisolatie, Ag-ELISA, real-time RT-PCR: epithelium, blaasvocht en serum (of EDTA-bloed)
- Serologie: serum

  • ONDERZOEK

Ontwikkeling van diagnostische testen en alternatieve in vitro testen voor vaccincontrole.

Ontwikkeling van antivirale middelen die alternatief of complementair zijn met (nood)vaccinatie en stamping out.

  • EXPERTISE
Het laboratorium heeft de nodige toelatingen en voorzieningen om het virus in veilige omstandigheden te isoleren. Het personeel heeft ervaring met serologische testen, virusisolatie en moleculaire diagnose van het MKZ virus uit klinische stalen.

WETENSCHAPPELIJK TEAM :fivre aphteuse

Kris De Clercq
David Lefebvre
Ilse de Leeuw

Andy Haegeman
Annebel De Vleeschauwer

Frank Vandensbussche (mass molecular diagnosis)


WORKSHOPS (PUBLICATIONS & RAPPORTS)

 

CODA-CERVA PUBLICATIES :

2013

- Lefebvre DJ, De Vleeschauwer AR, Goris N, Kollanur D, Billiet A, Murao L, Neys J., De Clercq K (On-line). Proof-of-concept for the inhibition of foot-and-mouth disease virus replication by the antiviral drug 2'-C-methylcytidine in severe combined immunodeficient mice. Transbound Emerg Dis. 2013 Mar 11. doi: 10.1111/tbed.12069. [Epub ahead of print], PMID:23480064

2012

-Willems T, Lefebvre DJ, Goris N, Diev VI, Kremenchugskaya SR, Paul G, Haas B, De Clercq K. (2012). Characteristics of serology-based vaccine potency models for foot-and-mouth disease virus. Vaccine, 30(40):5849-5855.


-De Vleeschauwer A, Lefebvre D, De Clercq K. (2012). Gebruik van antivirale middelen in de diergeneeskunde. Vlaams Diergeneeskundig Tijdschrift, 81 (5), 255-265.

2011

- Willems T, Lefebvre DJ, Neyts J, De Clercq K. (2011). Diagnostic performance and application of two commercial cell viability assays in foot-and-mouth disease research. J Virol Methods. 173(1):108-14.
Garland A.J.M., De Clercq K. (2011). Cattle, sheep and pigs vaccinated against foot and mouth disease: does trade in these animals and their products present a risk of transmitting the disease? Rev. sci. tech. Off. int. Epiz., 30 (1), 189-206.

2010
- Lefebvre DJ, Neyts J., De Clercq K.,  Development of a Foot-and-Mouth disease infection model in severe combined immunodeficient mice for the preliminary evaluation of antiviral drugs. Transboundary emerg dis, 2010,57(6),430-33

- Robiolo B, La Torre J, Maradei E, Beascoechea CP, Perez A, Seki C, Smitsaart E, Fondevila N, Palma E, Goris N, De Clercq K, Mattion N. Confidence in indirect assessment of foot-and-mouth disease vaccine potency and vaccine matching carried out by liquid phase ELISA and virus neutralization tests. Vaccine. 2010;28(38):6235-41.

- De Clercq K & Willems T. (2010). Validation of methods to Reduce, Refine, and Replace animal testing for diseases for which antibody is responsible for and a predictor of protection. In: Practical Alternatives to Reduce Animal Testing in Quality Control of Veterinary Biologicals in the Americas, Shudel A & Lombard M (eds), Fundacion PROSAIA, Buenos Aires, Argentina, 2010, 78-88.

- Van Vaerenbergh B, Koenen F., Pauwels K., Quanten K., Boyen F., De Clercq K., Desmecht D, Thiry J., Herman P. Methology of the biological risk classification of animal pathogens in Belgium. Rev sci tech OIE, 2010,29(3),513-22

2009

- Goris, N., Eblé, P.L., de Jong, M.C.M., De Clercq, K. (2009). Quantifying foot-and-mouth disease virus transmission rates using published data. ALTEX, 26(1):52-4.
- Mattion N, Goris N, Willems T, Robiolo B, Maradei E, Beascoechea CP, Perez A, Smitsaart E, Fondevila N, Palma E, De Clercq K, La Torre J. (2009). Some guidelines for determining foot-and-mouth disease vaccine strain matching by serology. Vaccine, 27(5):741-7.
- Goris N, Vandenbussche F, Herr C, Villers J, Van der Stede Y and De Clercq K. (2009). Validation of two real-time RT-PCR methods for foot-and-mouth disease diagnosis: RNA-extraction, matrix effect, uncertainty of measurement and precision. J. Vir. Meth., 160(1-2):157-62.
- Goris, N., De Clercq, K. (2009). Fit-for-purpose vaccine potency testing for animal diseases: challenging a regulatory system. Pharmeuropa SN, 21,1,47-48.

2008

- De Clercq K, Goris N, Barnett PV, MacKay DK. (2008a). The importance of quality assurance/quality control of diagnostics to increase the confidence in global foot-and-mouth disease control. Transbound Emerg Dis., 55(1):35-45.
- De Clercq K, Goris N, Barnett PV, MacKay DK. (2008b). FMD vaccines: reflections on quality aspects for applicability in European disease control policy. Transbound Emerg Dis., 55(1):46-56.
- Van Dessel W, Vandenbussche F, Staes M, Goris N, De Clercq K. (2008). Assessment of the diagnostic potential of immuno-RCA in 96-well ELISA plates for foot-and-mouth disease virus. J Virol Methods., 147(1):151-6.
- Goris N, Maradei E, D'Aloia R, Fondevila N, Mattion N, Perez A, Smitsaart E, Nauwynck HJ, La Torre J, Palma E, De Clercq K. (2008). Foot-and-mouth disease vaccine potency testing in cattle using homologous and heterologous challenge strains: Precision of the "Protection against Podal Generalisation" test. Vaccine, 26(27-28):3432-3437.
- Goris, N., Willems, T., Diev, V.I., Merkelbach-Peters, P., Vanbinst, T., Van der Stede, Y., Kraft, H.-P., Zakharov, V.M., Borisov, V.V., Nauwynck, H.J., Haas, B., De Clercq, K. (2008). Indirect foot-and-mouth disease vaccine potency testing based on a serological alternative. Vaccine, 26(31): 3870-3789.

- Dekker A, Sammin D, Greiner M, Bergmann I, Paton D, Grazioli S, de Clercq K, Brocchi E. (2008). Use of continuous results to compare ELISAs for the detection of antibodies to non-structural proteins of foot-and-mouth disease virus. Vaccine, 26(22):2723-32.
- Goris N, Vandenbussche F, De Clercq K. (2008). Potential of antiviral therapy and prophylaxis for controlling RNA viral infections of livestock. Antiviral Res., 78(1):170-8.
- Engel B, Buist W, Orsel K, Dekker A, de Clercq K, Grazioli S, van Roermund H. (2008). A Bayesian evaluation of six diagnostic tests for foot-and-mouth disease for vaccinated and non-vaccinated cattle. Prev Vet Med., 86: 124-138.

2007

- Goris N, De Palma A, Toussaint JF, Musch I, Neyts J, De Clercq K. (2007). 2'-C-Methylcytidine as a potent and selective inhibitor of the replication of foot-and-mouth disease virus. Antiviral Res, 73(3):161-168.

- Goris N, Merkelbach-Peters P, Diev VI, Verloo D, Zakharov VM, Kraft HP, De Clercq K. (2007). European Pharmacopoeia foot-and-mouth disease vaccine potency testing in cattle: Between test variability and its consequences. Vaccine Vaccine, 25(17):3373-3379.
- Goris N, Praet N, Sammin D, Yadin H, Paton D, Brocchi E, Berkvens D & De Clercq K. (2007). Foot-and-mouth disease non-structural protein serology in cattle: use of a Bayesian framework to estimate diagnostic sensitivity and specificity of six ELISA tests and prevalence in the field. Vaccine, 25(41):7177-96.
- Toussaint JF, Assam P, Caij B, Dekeyser F, Knapen K, Goris N, Imberechts H, Molenberghs G, Mintiens K, De Clercq K. (2007). Uncertainty of measurement for competitive and indirect ELISAs. Rev Sci Tech., 26(3):649-56.

2006

- Brocchi E, Bergmann IE, Dekker A, Paton DJ, Sammin DJ, Greiner M, Grazioli S, De Simone F, Yadin H, Haas B, Bulut N, Malirat V, Neitzert E, Goris N, Parida S, Sorensen K, De Clercq K. (2006). Comparative evaluation of six ELISAs for the detection of antibodies to the non-structural proteins of foot-and-mouth disease virus. Vaccine 24(47-48):6966-6979.
- Paton DJ, De Clercq K, Greiner M, Dekker A, Brocchi E, Bergmann I, Sammin DJ, Gubbins S, Parida S. (2006). Application of non-structural protein antibody tests in substantiating freedom from foot-and-mouth disease virus infection after emergency vaccination of cattle. Vaccine 24(42-43):6503-6512. Review.

- Ferris NP, King DP, Reid SM, Hutchings GH, Shaw AE, Paton DJ, Goris N, Haas B, Hoffmann B, Brocchi E, Bugnetti M, Dekker A, De Clercq K. (2006). Foot-and-mouth disease virus: a first inter-laboratory comparison trial to evaluate virus isolation and RT-PCR detection methods. Vet Microbiol 117(2-4):130-140.

2005

- Goris, N., De Clercq, K. (2005). Foot-and-mouth disease solid phase competition enzyme-linked immunosorbent assay quality assurance/quality control. Part I: Quality assurance: Development of secondary and working standards Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epiz. 24 (3): 995-1004.
- Goris, N., De Clercq, K. (2005). Foot-and-mouth disease solid phase competition enzyme-linked immunosorbent assay quality assurance/quality control. Part II: Quality control: comparison of two charting methods to monitor assay performance. Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epiz. 24 (3): 1005-1016.