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Fièvre aphteuse (FA)

INFORMATIONS GÉNÉRALES :

  • Famille: Picornaviridae, sous-famille:, genus: Aphthovirus
  • Maladie à déclaration obligatoire: Oui

EN QUELQUES LIGNES :

Fièvre aphteuseLe virus de la fièvre aphteuse (FA) est l'un des deux membres du genre Aphtovirus, dans la famille des Picornaviridae. Le virus de la fièvre aphteuse présente une hétérogénéité des antigènes et on reconnaît sept sérotypes: O, A, C, ASIA1, SAT1, SAT2, SAT3 (SAT = Southern African Territories, Territoires Sud-Africains). De plus, au sein de chaque sérotype, il y a une diversité antigénique considérable. Ceci est vrai en particulier pour le type A.
La fièvre aphteuse est une maladie des biongulés extrêmement contagieuse et dévastatrice. Toutes les espèces animales à sabots fendus sont susceptibles de la contracter.
Les pertes financières résultant de la fièvre aphteuse peuvent être significatives. Il existe des pertes directes dues à la mort de jeunes animaux, la perte de lait, la perte de viande et la diminution des performances de production.
Les coûts associés à son éradication ou son contrôle peuvent être élevés et, de plus, il existe des pertes indirectes dues à l'imposition de restrictions commerciales.

 

La fièvre aphteuse est endémique avec une prévalence élevée à travers la majeure partie de l'Afrique et du Moyen-Orient (types O et A). En Afrique du Sud, la maladie est principalement confinée aux animaux sauvages dans les parcs nationaux (types SAT). La fièvre aphteuse est endémique en Asie Centrale et du Sud-Est, sur le sous-continent Indien et probablement en Chine (types O, A et Asia). Le Japon (2000), la Corée (2000) et Taiwan (1997 - 2000) en ont longtemps été exempts jusqu'à ce que le type O PanAsia émerge.Virus fièvre aphteuse

 

Le diagnostic de la maladie est fait initialement sur des bases cliniques et ensuite confirmé au laboratoire par des méthodes virologiques, sérologiques ou biologiques moléculaires classiques. Les échantillons préférés pour détecter le virus sont l'épithélium, le sérum, le fluide vésiculaire ou le sang EDTA (isolement des virus, Ag-ELISA, RT-PCR en temps réel).

 

La vaccination est le moyen le plus efficace pour contrôler les pertes dues à la fièvre aphteuse mais devra souvent être combinée avec des méthodes d'abattage systématique.

Le CODA-CERVA et ses partenaires de l'Institut Rega de la KUL et Okapi Sciences font la recherche pour le développement de molécules anti-virales efficaces et sélectives, qui peuvent être alternative ou complémentaire à la vaccination d'urgence et l'abattage

fivre aphteuse virusRÔLE DU CODA-CERVA :

  • DIAGNOSTIC

Le CODA-CERVA est le laboratoire national belge de référence pour la fièvre aphteuse.

- Centre de référence FAO

- Centre OIE (Organisation mondiale de la santé animale) de Collaboration pour la Validation, l'Evaluation de la Qualité et le Contrôle Qualité des tests Diagnostiques et les contrôles de Vaccins pour les Maladies Vésiculaires en Europe

- Information spécifique pour le diagnostic (matrice, tests)
- Isolement de virus, Ag-ELISA, RT-PCR en temps réel : épithélium, fluide vésiculaire et sérum (ou sang-EDTA)
- Sérologie : sérum

  • RECHERCHE

Développement d'outils diagnostiques et des tests alternatifs in vitro de contrôle des vaccins.

Développement de molécules anti-virales qui peuvent être alternative ou complémentaire à la vaccination (d'urgence) et l'abattage systématique.

  • EXPERTISE

Le laboratoire dispose des autorisations et des installations nécessaires pour isoler le virus sans présenter de danger. Le personnel a de l'expérience dans les tests sérologiques, l'isolement de virus et le diagnostic moléculaire des virus de la fièvre aphteuse provenant d'échantillons cliniques.

ÉQUIPE SCIENTIFIQUE :fivre aphteuse

Kris De Clercq
David Lefebvre

Ilse de Leeuw
Andy Haegeman

Annebel De Vleeschauwer
Frank Vandensbussche (mass molecular diagnosis)


WORKSHOPS (PUBLICATIONS & RAPPORTS)


PUBLICATIONS CODA-CERVA :

2013

- Lefebvre DJ, De Vleeschauwer AR, Goris N, Kollanur D, Billiet A, Murao L, Neys J., De Clercq K (On-line). Proof-of-concept for the inhibition of foot-and-mouth disease virus replication by the antiviral drug 2'-C-methylcytidine in severe combined immunodeficient mice. Transbound Emerg Dis. 2013 Mar 11. doi: 10.1111/tbed.12069. [Epub ahead of print], PMID:23480064

2012

-Willems T, Lefebvre DJ, Goris N, Diev VI, Kremenchugskaya SR, Paul G, Haas B, De Clercq K. (2012). Characteristics of serology-based vaccine potency models for foot-and-mouth disease virus. Vaccine, 30(40):5849-5855.


-De Vleeschauwer A, Lefebvre D, De Clercq K. (2012). Gebruik van antivirale middelen in de diergeneeskunde. Vlaams Diergeneeskundig Tijdschrift, 81 (5), 255-265.

2011

- Willems T, Lefebvre DJ, Neyts J, De Clercq K. (2011). Diagnostic performance and application of two commercial cell viability assays in foot-and-mouth disease research. J Virol Methods. 173(1):108-14.
Garland A.J.M., De Clercq K. (2011). Cattle, sheep and pigs vaccinated against foot and mouth disease: does trade in these animals and their products present a risk of transmitting the disease? Rev. sci. tech. Off. int. Epiz., 30 (1), 189-206.
2010
- Lefebvre DJ, Neyts J., De Clercq K.,  Development of a Foot-and-Mouth disease infection model in severe combined immunodeficient mice for the preliminary evaluation of antiviral drugs. Transboundary emerg dis, 2010,57(6),430-33

- Robiolo B, La Torre J, Maradei E, Beascoechea CP, Perez A, Seki C, Smitsaart E, Fondevila N, Palma E, Goris N, De Clercq K, Mattion N.
Confidence in indirect assessment of foot-and-mouth disease vaccine potency and vaccine matching carried out by liquid phase ELISA and virus neutralization tests. Vaccine. 2010;28(38):6235-41.

- De Clercq K & Willems T. (2010). Validation of methods to Reduce, Refine, and Replace animal testing for diseases for which antibody is responsible for and a predictor of protection. In: Practical Alternatives to Reduce Animal Testing in Quality Control of Veterinary Biologicals in the Americas, Shudel A & Lombard M (eds), Fundacion PROSAIA, Buenos Aires, Argentina, 2010, 78-88.

- Van Vaerenbergh B, Koenen F., Pauwels K., Quanten K., Boyen F., De Clercq K., Desmecht D, Thiry J., Herman P. Methology of the biological risk classification of animal pathogens in Belgium. Rev sci tech OIE, 2010,29(3),513-22

2009

- Goris, N., Eblé, P.L., de Jong, M.C.M., De Clercq, K. (2009). Quantifying foot-and-mouth disease virus transmission rates using published data. ALTEX, 26(1):52-4.
- Mattion N, Goris N, Willems T, Robiolo B, Maradei E, Beascoechea CP, Perez A, Smitsaart E, Fondevila N, Palma E, De Clercq K, La Torre J. (2009). Some guidelines for determining foot-and-mouth disease vaccine strain matching by serology. Vaccine, 27(5):741-7.
- Goris N, Vandenbussche F, Herr C, Villers J, Van der Stede Y and De Clercq K. (2009). Validation of two real-time RT-PCR methods for foot-and-mouth disease diagnosis: RNA-extraction, matrix effect, uncertainty of measurement and precision. J. Vir. Meth., 160(1-2):157-62.
- Goris, N., De Clercq, K. (2009). Fit-for-purpose vaccine potency testing for animal diseases: challenging a regulatory system. Pharmeuropa SN, 21,1,47-48.

2008

- De Clercq K, Goris N, Barnett PV, MacKay DK. (2008a). The importance of quality assurance/quality control of diagnostics to increase the confidence in global foot-and-mouth disease control. Transbound Emerg Dis., 55(1):35-45.
- De Clercq K, Goris N, Barnett PV, MacKay DK. (2008b). FMD vaccines: reflections on quality aspects for applicability in European disease control policy. Transbound Emerg Dis., 55(1):46-56.
- Van Dessel W, Vandenbussche F, Staes M, Goris N, De Clercq K. (2008). Assessment of the diagnostic potential of immuno-RCA in 96-well ELISA plates for foot-and-mouth disease virus. J Virol Methods., 147(1):151-6.
- Goris N, Maradei E, D'Aloia R, Fondevila N, Mattion N, Perez A, Smitsaart E, Nauwynck HJ, La Torre J, Palma E, De Clercq K. (2008). Foot-and-mouth disease vaccine potency testing in cattle using homologous and heterologous challenge strains: Precision of the "Protection against Podal Generalisation" test. Vaccine, 26(27-28):3432-3437.
- Goris, N., Willems, T., Diev, V.I., Merkelbach-Peters, P., Vanbinst, T., Van der Stede, Y., Kraft, H.-P., Zakharov, V.M., Borisov, V.V., Nauwynck, H.J., Haas, B., De Clercq, K. (2008). Indirect foot-and-mouth disease vaccine potency testing based on a serological alternative. Vaccine, 26(31): 3870-3789.

- Dekker A, Sammin D, Greiner M, Bergmann I, Paton D, Grazioli S, de Clercq K, Brocchi E. (2008). Use of continuous results to compare ELISAs for the detection of antibodies to non-structural proteins of foot-and-mouth disease virus. Vaccine, 26(22):2723-32.
- Goris N, Vandenbussche F, De Clercq K. (2008). Potential of antiviral therapy and prophylaxis for controlling RNA viral infections of livestock. Antiviral Res., 78(1):170-8.
- Engel B, Buist W, Orsel K, Dekker A, de Clercq K, Grazioli S, van Roermund H. (2008). A Bayesian evaluation of six diagnostic tests for foot-and-mouth disease for vaccinated and non-vaccinated cattle. Prev Vet Med., 86: 124-138.

2007

- Goris N, De Palma A, Toussaint JF, Musch I, Neyts J, De Clercq K. (2007). 2'-C-Methylcytidine as a potent and selective inhibitor of the replication of foot-and-mouth disease virus. Antiviral Res, 73(3):161-168.

- Goris N, Merkelbach-Peters P, Diev VI, Verloo D, Zakharov VM, Kraft HP, De Clercq K. (2007). European Pharmacopoeia foot-and-mouth disease vaccine potency testing in cattle: Between test variability and its consequences. Vaccine Vaccine, 25(17):3373-3379.
- Goris N, Praet N, Sammin D, Yadin H, Paton D, Brocchi E, Berkvens D & De Clercq K. (2007). Foot-and-mouth disease non-structural protein serology in cattle: use of a Bayesian framework to estimate diagnostic sensitivity and specificity of six ELISA tests and prevalence in the field. Vaccine, 25(41):7177-96.
- Toussaint JF, Assam P, Caij B, Dekeyser F, Knapen K, Goris N, Imberechts H, Molenberghs G, Mintiens K, De Clercq K. (2007). Uncertainty of measurement for competitive and indirect ELISAs. Rev Sci Tech., 26(3):649-56.

2006

- Brocchi E, Bergmann IE, Dekker A, Paton DJ, Sammin DJ, Greiner M, Grazioli S, De Simone F, Yadin H, Haas B, Bulut N, Malirat V, Neitzert E, Goris N, Parida S, Sorensen K, De Clercq K. (2006). Comparative evaluation of six ELISAs for the detection of antibodies to the non-structural proteins of foot-and-mouth disease virus. Vaccine 24(47-48):6966-6979.
- Paton DJ, De Clercq K, Greiner M, Dekker A, Brocchi E, Bergmann I, Sammin DJ, Gubbins S, Parida S. (2006). Application of non-structural protein antibody tests in substantiating freedom from foot-and-mouth disease virus infection after emergency vaccination of cattle. Vaccine 24(42-43):6503-6512. Review.

- Ferris NP, King DP, Reid SM, Hutchings GH, Shaw AE, Paton DJ, Goris N, Haas B, Hoffmann B, Brocchi E, Bugnetti M, Dekker A, De Clercq K. (2006). Foot-and-mouth disease virus: a first inter-laboratory comparison trial to evaluate virus isolation and RT-PCR detection methods. Vet Microbiol 117(2-4):130-140.

2005

- Goris, N., De Clercq, K. (2005). Foot-and-mouth disease solid phase competition enzyme-linked immunosorbent assay quality assurance/quality control. Part I: Quality assurance: Development of secondary and working standards Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epiz. 24 (3): 995-1004.
- Goris, N., De Clercq, K. (2005). Foot-and-mouth disease solid phase competition enzyme-linked immunosorbent assay quality assurance/quality control. Part II: Quality control: comparison of two charting methods to monitor assay performance. Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epiz. 24 (3): 1005-1016.